在2022年初,加州大学伯克利分校的Daniel K. Nomura教授团队运用基于活性的蛋白质图谱分析(activity-based protein profiling, ABPP)对65种去泛素化酶的反应性半胱氨酸进行全局性分析。 研究结果发现,泛素化酶OTUB1的C23位点不参与酶活性的调控且具有较高的亲核性,是一个理想的配体结合位点。由于细胞中主要介导蛋白质降解的最丰富的泛素链是K48链,而OTUB1则是靶向移除K48链的去泛素化酶。 理论上,利用OTUB1去针对性地去除特定蛋白上的泛素链,防止以泛素化依赖方式被降解的特定蛋白质被蛋白酶体降解,是非常有效的。
图2. EN523结构
(1)ΔF508-CFTR-DUBTACs Daniel K. Nomura教授团队基于上述发现筛选出了一个与OUTB1高亲和力结合的共价配体EN523(图2)。其中,EN523与OTUB1结合是通过EN523的丙烯酰胺部分与OTUB1变构半胱氨酸残基Cys23共价作用来实现的。他们通过体外实验证明EN523对OTUB1的酶活性没有显著影响。 随后,研究人员将筛选到的EN523与ΔF508-CFTR调节剂Lumacaftor连接起来所获得的异源双功能小分子NJH-2-057用于靶向CFTR突变体ΔF508-CFTR的稳定从而改善囊性纤维化。 实验结果表明,NJH-2-057可以有效稳定ΔF508-CFTR,而单独使用Lumacaftor的结果则与对照组差异不明显(图3)。这一结果为DUBTAC技术的发展提供了概念验证。
图3. NJH-2-057稳定CFTR
(2)WEE1-DUBTACs Daniel K. Nomura教授团队随后将DUBTAC技术应用于提高抑癌基因WEE1的稳定性,WEE1是一种非恶性真核体细胞中的肿瘤抑制激酶,可磷酸化细胞周期蛋白依赖性激酶(CDK1)-细胞周期蛋白B1复合物,以抑制有丝分裂S期和G2期的细胞周期进展,并且必须下调其活性才能发生有丝分裂进展。WEE1在许多肿瘤中被降解以促进癌细胞增殖。稳定癌细胞中WEE1激酶的水平有望阻止肿瘤生长。 研究人员将EN523与一种临床WEE1抑制剂AZD1775通过烷基链linker或基于聚乙二醇的linker连接合成了靶向肿瘤抑制性激酶WEE1的DUBTAC。研究显示,DUBTAC能显著稳定肝癌细胞系中的WEE1,而EN523或AZD1775单独治疗对WEE1水平没有影响(图4)。
图4. WEE1 DUBTAC稳定WEE1
这进一步证明了DUBTAC技术用于TPS的普适性,此外,Daniel K. Nomura教授团队的研究也强调了使用化学蛋白质组学支持的共价配体发现平台的实用性。 (3)TF-DUBTACs 2022年6月份,来自美国哈佛医学院的Wenyi Wei教授团队在此前研究的基础上,使用EN523招募去泛化素酶OTUB1进一步开发了能够稳定抑癌转录因子(Transcription Factor,TF)的首个TF-DUBTAC药物平台,旨在通过稳定TF实现对肿瘤的治疗(图5)。